мнс,
г. Москва
Moscow
внс, канд. с.-х. наук,
г. Москва
Moscow
В статье представлены результаты исследования особенностей морфогенеза сортов крыжовника обыкновенного (Ribes uva-crispa L.) на всех этапах культивирования in vitro и адаптации к условиям ex vitro. На этапе введения в культуру in vitro установлен оптимальный способ стерилизации: последовательное применение 2 % раствора «Фундазола» с экспозицией 10-15 минут, 70 % этанола в течение 30 секунд и 7 % гипохлорита кальция – 5-7 минут. Максимальное количество жизнеспособных регенерантов крыжовника было получено при отборе первичных эксплантов в период начала активного роста побегов (апрель – начало мая). Частота регенерации при этом составила 70-80 % в зависимости от сорта. Определен оптимальный размер эксплантов, минеральный и углеводный состав питательных сред и условия культивирования на этапе собственно микроразмножения. Наибольшим значением коэффициента размножения характеризовались сорта: Грушенька (6,1-6,7), Берилл (3,1- 4,9) и Черномор (3,5-4,5). Установлено, что для культивирования исследуемых сортов крыжовника наиболее эффективно использовать питательную среду с минеральной основой Quorin and Lepoivre. В качестве источника углеводов оптимальным было использование сахарозы в концентрации 30 г/л. Установлено, что на этапе собственно микроразмножения наиболее эффективно культивировать крыжовник в течение 20-25 дней при пониженной температуре 16-18 ºС. На этапе ризогенеза выявлена эффективность использования ИМК в концентрации 1,0 мг/л. Применение мха сфагнума в составе почвенного субстрата при адаптации регенерантов крыжовника способствовало высокой приживаемости от 97 % до 100 % на всех вариантах субстрата. Изучение влияния состава почвенного субстрата на динамику роста регенерантов показало, что адаптацию крыжовника было эффективно осуществлять на субстрате, состоящем из торфа и мха сфагнума.
The article presents the results of the study on the morphogenesis peculiarities of Ribes uva-crispa L. varieties at all stages of in vitro cultivation and adaptation to ex vitro conditions. The optimal method of sterilization at the initiation stage to in vitro culture was established: consistent application of 2 % «Fundazole» solution with an exposure of 10-15 minutes, 70 % ethanol for 30 seconds and 7 % calcium hypochlorite for 5-7 minutes. The maximum number of viable gooseberry regenerants was obtained in the selection of initial explants during the beginning of active shoots growth (April – early May). The regeneration frequency was 70-80 %, depending on the variety. The optimal size of explants, the mineral and carbohydrate composition of the culture medium, and the cultivation conditions at the propagation stage were determined. The highest multiplication rate was characterized by varieties: Grushenka (6.1-6.7), Beryl (3.1-4.9) and Chernomor (3.5-4.5). It has been established that Quorin and Lepoivre culture medium was the most eff ective medium for the cultivation of the studied gooseberry varieties. As a source of carbohydrates, the use of sucrose at a concentration of 30 g/L was optimal. It was found eff ective to cultivate gooseberries for 20-25 days at a reduced temperature (16-18 °C) at the propagation stage. The efficiency of using 1.0 mg/l IBA at the rooting stage was revealed. The use of sphagnum as part of the soil substrate at the adaptation of gooseberry regenerants contributed to a high survival rate (97-100 %) in all substrate variants. The study of the infl uence of the composition of the soil substrate on the growth dynamics of regenerants showed that the adaptation of gooseberries was eff ectively carried out on a substrate consisting of peat and sphagnum.
The authors declare that there are no conflicts of interest present.