fruitberryПлодоводство и ягодоводство РоссииPomiculture and small fruits culture in Russia2073-4948ФГБНУ ВСТИСП10.31676/2073-4948-2020-62-172-178fruitberry-839Research ArticleМЕТОДЫ И СПОСОБЫ ЗАЩИТЫ РАСТЕНИЙ ОТ ВРЕДИТЕЛЕЙ И БОЛЕЗНЕЙMETHODS AND WAYS OF PROTECTING PLANTS FROM DISEASE AND PESTSГриб Spaeropsis Malorum Peck. Один из возбудителей усыхания стеблей смородиныFungus Spaeropsis Malorum peck. One of the currant stalk drying agentsГоловинС. Е.GolovinS. E.

внс, д-р. с.-х. наук,

г. Москва

Moscow

block2410@yandex.ruФГБНУ ВСТИСПРоссияAll-Russian Horticultural Institute for Breeding, Agrotechnology and NurseryRussian Federation202001102020620172178Copyright © Головин С.Е., 20202020Головин С.Е.Golovin S.E.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://www.plodovodstvo.com/jour/article/view/839

В статье освещены результаты исследований, проведенных в 2019- 2020 гг. по изучению причин усыхания стеблей смородины черной (Ribes nigrum L.), смородины красной (Ribes rubrum L.) и смородины золотистой (Ribes aureum L.). В результате исследований гриб Sphaeropsis malorum Peck. впервые в России был выделен из усыхающих стеблей трех видов смородины черной, смородины красной и смородины золотистой. Этот патоген заселял стебли смородины совместно с грибами из рода Cytospora spp., возбудителями усыхания стеблей. На смородине красной установлено, что S. malorum являлся основным возбудителем усыхания ветвей, на что указывает высокая частота встречаемости (75,0-83,3 %) этого гриба на пораженных стеблях, по сравнению с видами из рода Cytospora spp. (16,7- 33,3 %) и Phomopsis ribesia (25,0 %). В связи с тем, что выращивание смородины в непосредственной близости от деревьев яблони и груши приводит к заражению растений грибом S. malorum, то необходимо избегать высаживать смородину в близи от плодоносящих садов семечковых культур.

The article highlights the results of research carried out in 2019-2020 to study the reasons for the drying out of the stems of black currant (Ribes nigrum L.), red currant (Ribes rubrum L.) and golden currant (Ribes aureum L.). As a result of research, the fungus Sphaeropsis malorum Peck. in the first in Russia it was revealed from the drying stems of three types of black currants, red currants and golden currants. This  pathogen inhabited currant stems together with fungi from the genus Cytospora spp., causative agents of stem drying. On red currants, it was established that S. malorum was the main causative agent of branch drying, as indicated by the high frequency of occurrence (75.0-83.3 %) of this fungus on the affected stems, compared with species from the genus Cytospora spp. (16.7-33.3 %) and Phomopsis ribesia (25.0 %). Due to the fact that the cultivation of currants in the immediate vicinity of apple and pear trees leads to infection of plants with the fungus S. malorum, it is necessary to avoid planting currants in the vicinity of fruit-bearing seed gardens.

смородина чернаясмородина краснаясмородина золотистаяпатогенмикромицетыblack currantred currantgolden currantpathogenmicromycetesReferencesPhillips A. J. L., Crous, P.W., Alves A. Diplodia seriata, the anamorph of “Botryosphaeria” obtusa. Fungal Diversity. 2007;25:141-155.Phillips A. J. L., Crous, P.W., Alves A. Diplodia seriata, the anamorph of “Botryosphaeria” obtusa. Fungal Diversity. 2007;25:141-155.Slippers B., Wingfield M. J. Botryosphaeriaceae as endophytes and latent pathogens of woody plants: diversity, ecology and impact. Fungal Biology Reviews. 2007;21(2/3):90-106.Slippers B., Wingfield M. J. Botryosphaeriaceae as endophytes and latent pathogens of woody plants: diversity, ecology and impact. Fungal Biology Reviews. 2007;21(2/3):90-106.Farr D. F., Rossman A. Y. 2020. Fungal Databases, U.S. National Fungus Collections, ARS, USDA. https://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/Farr D. F., Rossman A. Y. 2020. Fungal Databases, U.S. National Fungus Collections, ARS, USDA. https://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/Michailides T. J. Pathogenicity, distribution, sources of inoculum, and infection courts of Botryosphaeria dothidea on pistachio. Phytopathology. 1991;81(5):566-573.Michailides T. J. Pathogenicity, distribution, sources of inoculum, and infection courts of Botryosphaeria dothidea on pistachio. Phytopathology. 1991;81(5):566-573.Pusey P. L. Availability and dispersal of ascospores and conidia of Botryosphaeria in peach orchards. Phytopathology. 1989;79(6):635-639.Pusey P. L. Availability and dispersal of ascospores and conidia of Botryosphaeria in peach orchards. Phytopathology. 1989;79(6):635-639.Kim Ki Woo, Park Eun Woo, Ahn Kyung Ku. Pre-penetration behavior of Botryosphaeria dothidea on apple fruits. Plant Pathology Journal. 1999;15(4):223-227.Kim Ki Woo, Park Eun Woo, Ahn Kyung Ku. Pre-penetration behavior of Botryosphaeria dothidea on apple fruits. Plant Pathology Journal. 1999;15(4):223-227.Шматковская Е. Болезни многолетней древесины в агроценозах виноградников северного причерноморья и особенности их развития. Ştiinţa Agricolă. 2014;2:46-50.Шматковская Е. Болезни многолетней древесины в агроценозах виноградников северного причерноморья и особенности их развития. Ştiinţa Agricolă. 2014;2:46-50.Корнилов Б. Б., Долматов Е. А. Устойчивость к болезням декоративных форм семечковых культур в условиях Орловской области. Современное садоводство. 2014;4. http://journal-vniispk.ru/pdf/2014/4/52.pdfКорнилов Б. Б., Долматов Е. А. Устойчивость к болезням декоративных форм семечковых культур в условиях Орловской области. Современное садоводство. 2014;4. http://journal-vniispk.ru/pdf/2014/4/52.pdfКирай З., Клемент З., Шоймоши Ф., Вереш Й. Методы фитопатологии. М.: Колос, 1974, 344 с.Кирай З., Клемент З., Шоймоши Ф., Вереш Й. Методы фитопатологии. М.: Колос, 1974, 344 с.Литвинов М. А. Методы изучения почвенных микроскопических грибов. - Акад. наук СССР. - Л. изд. «Наука». - 1969. - 124 с.Литвинов М. А. Методы изучения почвенных микроскопических грибов. - Акад. наук СССР. - Л. изд. «Наука». - 1969. - 124 с.Гагкаева Т. Ю., Гаврилова О. П., Левитин М. М., Новожилов К. В. Фузариоз зерновых культур. Защита и карантин растений. 2011;5(Приложение):69-120.Гагкаева Т. Ю., Гаврилова О. П., Левитин М. М., Новожилов К. В. Фузариоз зерновых культур. Защита и карантин растений. 2011;5(Приложение):69-120.Пидопличко Н. М. Грибы – паразиты культурных растений. Определитель. Т. 2. Грибы несовершенные. Киев: Наукова думка, 1977, 290 с.Пидопличко Н. М. Грибы – паразиты культурных растений. Определитель. Т. 2. Грибы несовершенные. Киев: Наукова думка, 1977, 290 с.Пидопличко Н. М. Грибы – паразиты культурных растений. Определитель. Т. 3. Пикнидиальные грибы. Киев: Наукова думка, 1978, 232 с.Пидопличко Н. М. Грибы – паразиты культурных растений. Определитель. Т. 3. Пикнидиальные грибы. Киев: Наукова думка, 1978, 232 с.Bensch K., Groenewald J. Z., Dijksterhuis J., Starink-Willemse M., Andersen B., Summerell B. A., Shin H.-D., Dugsn F. M., Schroers H.-J., Braun U., Crous P. W. Species and ecological diversity within the Cladosporium cladosporioides complex (Davidiellaceae, Capnodiales). Stud. Mycol. 2010: pp. 1-94.Bensch K., Groenewald J. Z., Dijksterhuis J., Starink-Willemse M., Andersen B., Summerell B. A., Shin H.-D., Dugsn F. M., Schroers H.-J., Braun U., Crous P. W. Species and ecological diversity within the Cladosporium cladosporioides complex (Davidiellaceae, Capnodiales). Stud. Mycol. 2010: pp. 1-94.Gerlach W., Nirenberg H. Th e genus Fusarium – a pictorial atlas. Mitt. Biol. Bundesanst. Berlin – Dahlem, Land. Forstwirsch, 1982, 153 р.Gerlach W., Nirenberg H. Th e genus Fusarium – a pictorial atlas. Mitt. Biol. Bundesanst. Berlin – Dahlem, Land. Forstwirsch, 1982, 153 р.Simmons E.G. Alternaria. An Identification Manual. Utrecht. CBS, 2007, 236 р.Simmons E.G. Alternaria. An Identification Manual. Utrecht. CBS, 2007, 236 р.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.