|Generate QR code
Open Access
Subscription Access
Improvement of clonal micropropagation procedure for Rosa L. representatives
https://doi.org/10.31676/2073-4948-2025-80-48-58
Abstract
This research is aimed at optimizing the methodology of clonal micropropagation of Rosa L. regenerants with a view to selecting optimal conditions for implementation of their morphogenetic potential on the example of Alan Titchmarsh and Princess Alexandra of Kent varieties. Experiments were conducted using the facilities of the Laboratory of Plant Biotechnology, Main Botanical Garden of the Russian Academy of Sciences, during the period of 2024–2025. Current-year shoot segments with a length of up to 1.5 cm containing vegetative buds were used as primary explants for initiation of growth and development in vitro. We developed an optimal sterilization scheme, allowing up to 91% of viable aseptic explants to be obtained. The conducted experiments revealed specific features of regeneration of Rosa L. explants in vitro, depending on the type and concentration of growth-regulating chemicals. The hormonal composition of nutrient media for cultivation of regenerant plants of different varieties at the micropropagation stage was optimized. The efficiency of using the MS nutrient medium (Murashige and Skoog, 1962) supplemented with 6-benzylaminopurine (BAP) and thidiazuron (TDZ) at concentrations of 0.5 mg/L and 0.1 mg/L, respectively, was established. The reproduction rate was 8.4.
Supporting agencies: The work was conducted in accordance with the state assigment of the Main Botanical Garden of the Russian Academy of Sciences, Entitled «Biological divercity of natural and cultural flora: fundamental and applied issues of study and conversation», with the relevant state registration number 122042700002-6.
About the Author
E. V. Soboleva
Main Botanical Garden named after N. V. Tsitsin of the Russian Academy of Sciences
Russian Federation
Russian Federation
Moscow
References
1. Шевырева Т. В. 2023, URL: https://bigenc.ru/c/roza-5a4c73?utm_source=chatgpt.com. Ссылка активна на 07.02.2025.
2. Соломенцева А. С. Внутривидовой полиморфизм шиповников в условиях засушливой зоны как фактор повышения биоразнообразия урбанизированных территорий, Наука. Мысль. 2016;6(7-1):25-30.
3. Найда Н. М., Дюндиков Е. Э. Сравнительное анатомическое исследование вегетативных органов двух сортов роз, Известия СПбГАУ. 2022;1(66):17-28. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/sravnitelnoe-anatomicheskoe-issledovanie-vegetativnyhorganov-dvuh-sortov-roz (дата обращения: 19.01.2025).
4. Кафарова О. О. Интродукция, селекция и биологические особенности роз группы флорибунда на Абшероне. Баку: «Элм», 2020, 5 с.
5. Соболева Е. В. Особенности депонирования представителей рода Rosa L. в культуре in vitro, Международный журнал прикладных наук и технологий Integral. 2021;4:23. DOI: 10.24412/2658–3569-2021-10069.
6. Молканова О. И., Васильева О. Г., Коновалова Л. Н. и др. Особенности размножения и сохранения коллекции экономически важных растений в условиях in vitro, Биотехнология как инструмент сохранения биоразнообразия растительного мира (физиолого-биохимические, эмбриологические, генетические и правовые аспекты) : материалы VII Международной научно-практической конференции, посвященной 30-летию отдела биотехнологии растений Никитского ботанического сада, Симферополь, 25 сентября 2016 года. Симферополь: Общество с ограниченной ответственностью «Издательство Типография «Ариал». 2016;156-157.
7. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures, Physiologia plantarum. 1962;15(3):473-497.
8. Упадышев М. Т. Действие 6-БАП и тидиазурона на пролиферативную способность ягодных и плодовых культур in vitro, Новые и нетрадиционные растения и перспективы их использования. 2017;S12:263-265.
9. Круглова Н. Н., Зинатуллина Н. Н., Круглова А. Е. Роль синтетического гормона тидиазурона в регуляции непрямой регенерации растений in vitro, Таврический вестник аграрной науки. 2024;2(38):103-118. DOI: 10.5281/zenodo.12200181.
10. Werbrouck S.P.O., Debergh P. C. Imazalil enhances the shoot-inducing eff ect of benzyladenine in Spathiphyllum fl oribundum Schott, J Plant Growth Regul. 1995;14:105- 107. DOI: 10.1007/BF00203121.
11. Kucharska D., Orlikowska T., Maciorowski R., Kunka M., Wojcik D., Pluta S. Application of meta-Topolin for improving micropropagation of gooseberry (Ribes grossularia), Scientia Horticulturae. 2020;272(109529):1-5. DOI: 10.1016/j.scienta.2020.109529.
12. Novikova T. I., Zaytseva Y. G. TDZ-induced morphogenesis pathways in woody plant culture, Thidiazuron: From urea derivative to plant growth regulator. Singapore: Springer. 2018;61-94. DOI: 10.1007/978-981-10-8004-3_3.
13. Макаров С. С., Соболева Е. В., Чудецкий А. И. Особенности органогенеза малораспространенных сортов рода Rosa L. при клональном микроразмножении, Научные труды Чебоксарского филиала Главного ботанического сада им. Н. В. Цицина РАН. 2023;19:65-68.
14. Молканова О. И., Ширнина И. В., Коновалова Т. Ю. и др. Сохранение генофонда ценных и редких видов растений в генетическом банке in vitro, Настоящее и будущее биотехнологии растений: материалы Международной научной конференции, посвященной 65-летию деятельности Отдела биохимии и биотехнологии растений Государственного научного учреждения «Центральный ботанический сад НАН Беларуси», Минск, 24-26 мая 2023 года. Минск: ИВЦ Минфина, 2023;133 с. ISBN 978-985-880-344-5.
15. Соболева Е. В., Демидова А. П. Воспроизводство in vitro некоторых представителей рода Rosa L., Материалы Международной научной конференции молодых ученых и специалистов, посвященной 150-летию со дня рождения А. Я. Миловича: Сборник статей, Москва, 03-05 июня 2024 года, Российский государственный аграрный университет – МСХА им. К. А. Тимирязева. 2024;74-79.
16. Маркова М. Г., Сомова Е. Н. Оптимизация приемов введения садовых растений в стерильную культуру in vitro, Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. 2022;4:71-81. DOI: 10.26897/0021-342Х-2022-4-71-81.
17. Баймухаметова Э. А., Кулуев Б. Р. Потемнение растительных тканей при культивировании in vitro и способы его предотвращения, Биотехнология. 2020;36(2):26-42. DOI: 10.21519/0234-2758-2020-36-2-26-42.
18. Пугачева А. М., Бикметова К. Р., Смирнова Ю. С. Сорбенты фенолов как компоненты питательной среды в микроклональном размножении растений, Природные системы и ресурсы. 2021;11(3):39-48. DOI: 10.15688/nsr.jvolsu.2021.3.6.
19. Митрофанова И. В. Индукторы и ингибиторы биотехнологических процессов размножения и сохранения растений, Х Международная конференция «Биология клеток растений in vitro и биотехнология», Сборник тезисов, Казань: Казанский институт биохимии и биофизики Казанского научного центра РАН. 2013:49-50.
20. Nishchal N., Mir H., Rani R., Pal A. K. Eff ect of antioxidants in controlling phenol exudation in micropropagation of Litchi cv. Purbi, Cur. Journ. Applied Sci. and Technology. 2018;31:1-7. DOI: 10.9734/CJAST/2018/45992.
Review
For citations:
Soboleva E.V. Improvement of clonal micropropagation procedure for Rosa L. representatives. Pomiculture and small fruits culture in Russia. 2025;80:48-58. (In Russ.) https://doi.org/10.31676/2073-4948-2025-80-48-58
Views:
180
Email this article 
