Preview

Pomiculture and small fruits culture in Russia

Advanced search
Open Access Open Access  Restricted Access Subscription Access

Comparative analysis of the pathogen complex and disease resistance in garden strawberry under protected and open field conditions

Abstract

Phytosanitary monitoring of strawberry cultivars and selected forms from the collection of the Federal Horticultural Center for Breeding, Agrotechnology and Nursery was conducted to identify diff erences in the pathogen complex between open and protected fi eld conditions, with species identifi cation clarifi ed under laboratory conditions. Research was conducted in 2024–2025. We established that the pathogen complexes of micromycetes in strawberry plantings in Moscow and Bryansk oblasts include: Botrytis cinerea, Coniothyrium fuckelii, Cylindrocarpon spp., Dactylonectria macrodidyma, Fusarium solani, Marssonina potentillae var. fragariae, Pestalotia truncata, Phoma spp., Phomopsis spp., Pythium spp., and Rhizoctonia solani. Comparative analysis of the micromycete complexes revealed diff erences between the regions. For instance, Phytophthora nicotianae oomycete was not detected on plants from Bryansk oblast, while Coniothyrium fragariae leaf spot pathogen was not found in Moscow oblast. The lowest frequency of R. solani occurrence was noted in the Tsaritsa cultivar, with an average percentage of colonization by the fungus observed in Nashe Podmoskovye and Vostorg cultivars. At the same time, a lower incidence of phytophthora wilt was noted in Vityaz and Vostorg cultivars. In Moscow oblast under open fi eld conditions during the growing season, the infection score for leaves by the Botrytis cinerea fungus across cultivars was: Bereginya – 1.5, Vostorg – 1.5, Nashe Podmoskovye – 1.0, Tsaritsa – 2.0. Powdery mildew infection was recorded within a range of 0–1 point on the studied cultivars. Under protected conditions, resistance to gray rot was noted in the Tsaritsa cultivar (0.5 points), while powdery mildew infection was observed in Vostorg and Bereginya cultivars at a level of 0.2–0.3 points. In the conditions of open fi eld in Bryansk oblast, the Tsaritsa cultivar and selected forms Nos. 3-5- 1, 3-831-18, 3-434-5, 3-731-3 were distinguished by their resistance to powdery mildew (0 points). Selected form 3-395-3 showed notable resistance to gray mold.

About the Authors

S. E. Golovin
Federal Horticultural Center for Breeding, Agrotechnology and Nursery
Russian Federation

Moscow



M. S. Donesevich
Federal Horticultural Center for Breeding, Agrotechnology and Nursery
Russian Federation

Moscow



N. N. Andronova
Federal Horticultural Center for Breeding, Agrotechnology and Nursery
Russian Federation

Moscow



Yu. V. Afanasyeva
Federal Horticultural Center for Breeding, Agrotechnology and Nursery
Russian Federation

Moscow



References

1. Марченко Л. А. Исходные формы земляники садовой для селекции на продуктивность и качество плодов, Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. 2023;2:37-45. DOI: 10.26897/0021-342X-2023-2-37-45.

2. Головин С. Е., Глинушкин А. П., Зеркалов И. А. и др. Патокомплекс почвенных микромицетов, ассоциирующихся с корневыми и прикорневыми гнилями земляники, в некоторых регионах России, Достижения науки и техники АПК. 2019;33(7):62-70. DOI: 10.24411/0235-2451-2018-10715.

3. Говорова Г. Ф., Говоров Д. Н. Грибные болезни земляники и клубники. Монография; Российский государственный аграрный ун-т МСХА им. К. А. Тимирязева. Москва: Проспект, 2019. 142 с. ил. ISBN 978-5-392-21593-5.

4. Кащиц Ю. П. Видовой состав фитопатогенных микромицетов листьев и ягод земляники садовой в Краснодарском крае и Республике Адыгея, Бюллетень Государственного Никитского ботанического сада. 2020;137:23-28. DOI: 10.36305/0513-1634-2020-137-23-28.

5. Андронова Н. В., Орехова Г. В. Селекция земляники на устойчивость к грибным болезням, Плодоводство и ягодоводство России. 2008;19:3-7. EDN MBGQSL.

6. Xiao G, Zhang Q, Zeng X, Chen X, Liu S and Han Y. Deciphering the Molecular Signatures Associated With Resistance to Botrytis cinerea in Strawberry Flower by Comparative and Dynamic Transcriptome Analysis, Frontiers in Plant Science. 2022;13:888939. DOI: 10.3389/fpls.2022.888939.

7. Невоструева Е. Ю. Оценка исходных форм земляники на устойчивость к серой гнили в условиях Среднего Урала, Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2025;26(1):90-97. DOI: 10.30766/2072-9081.2025.26.1.90-97.

8. Айтжанова С. Д., Андронова Н. В. Создание устойчивых к грибным болезням сортов – основное решение проблемы защиты растений, Плодоводство и ягодоводство России. 2013;36(1):14-19. EDNPWRKEL.

9. Лыжин А. С., Лукъянчук И. В. Молекулярный скрининг образцов земляники генетической коллекции «ФНЦ им. И. В. Мичурина» по локусу 08 to-f устойчивости к мучнистой росе, Таврический вестник аграрной науки. 2024;1(37):103-111. DOI: 10.5281/zenodo.10926231.

10. Храбров И. Э., Антонова О. Ю., Шаповалов М. И., Семенова Л. Г. Устойчивость земляники к основным грибным фитопатогенам: R-гены и их ДНК-маркеры, Биотехнология и селекция растений. 2019;2(3):30-40. DOI: 10.30901/2658-6266-2019-3-o3.

11. Лыжин А. С., Лукъянчук И. В. Изучение генетической коллекции земляники (Fragaria L.) по устойчивости к мучнистой росе, Вавиловский журнал генетики и селекции. 2024;28(2):166-174. DOI: 10.18699/vjgb-24-19.

12. Стольникова Н. П. Оценка устойчивости земляники садовой к земляничному клещу, белой и бурой пятнистостям листьев, мучнистой росе, Сибирское садоводство ХХI века – вектор развития: Сборник материалов Всероссийской научно-практической конференции, посвященной 300-летию РАН и 90-летию создания НИИ садоводства Сибири имени М.А. Лисавенко, Барнаул, 23-24 августа 2023 года. Барнаул: ООО Азбука, 2023. 139-144. EDN HZOBMM.

13. Tapia Ronald Retal. Evolution of the MLO gene families in octoploid strawberry (Fragaria×ananassa) and progenitor diploid species identifi ed potential genes for strawberry powdery mildew resistance, Horticulture research. 2021;8(1):153. DOI: 10.1038/s41438-021-00587-y.

14. Palmer Michael G, and Gerald J Holmes. Fungicide Sensitivity in Strawberry Powdery Mildew Caused by Podosphaera aphanis in California, Plant disease. 2021;105(9):2601-2605. DOI: 10.1094/PDIS-12-20-2604-RE.

15. Программа и методика сортоизучения плодовых, ягодных и орехоплодных культур. Под ред. Е. Н. Седова и Т. П. Огольцовой. Орел: ВНИИСПК, 1999. 608 с.

16. Зубков А. Ф. Агробиоценологическая фитосанитарная диагностика. СПб: Пушкин, 1995. 386 с.

17. Garrid C., González-Rodríguez V. E., Carbú M., Husaini A. M., Cantoral J. M. Fungal Diseases of Strawberry and their Diagnosis, CAB International for Amjad M. Husaini Chapter, 2021. DOI: 10.1079/9781780646633.0157.

18. Habibi A., Ghaderi F. First record of Dactylonectria macrodidyma causing black root rot on strawberry, Mycologia Iranica. 2020;7(2):241-246. DOI: 10.22043/mi.2020.124511.

19. Головин С. Е. Корневые и прикорневые гнили садовых растений: распространенность, вредоносность, диагностика: монография. М.: ФГБНУ ВСТИСП, ООО «Принт-2», 2016. 440 с.


Review

For citations:


Golovin S.E., Donesevich M.S., Andronova N.N., Afanasyeva Yu.V. Comparative analysis of the pathogen complex and disease resistance in garden strawberry under protected and open field conditions. Pomiculture and small fruits culture in Russia. 2025;83:86-97. (In Russ.)

Views: 9


ISSN 2073-4948 (Print)