Динамика накопления фотосинтетических пигментов в листьях Trititrigia Cziczinii Tzvel.

Продуктивность растений зависит от эффективности работы фотосинтетических пигментов, из которых наиболее важным является хлорофилл. В условиях дерново-подзолистых среднесуглинистых почв Московской области изучались особенности накопления фотосинтетических пигментов (хлорофилла a и хлорофилл b) и фотосинтетического аппарата новой синтетической зерновой культуры Trititrigia cziczinii Tzvel. (сорт Памяти Любимовой, линии № 3202) по сравнению с сортом озимой пшеницы (Рубежная), полученного методом отдаленной гибридизации. Динамику накопления хлорофилла a и хлорофилла b в листьях зерновых культур измеряли в период генеративного развития растений начиная с фазы колошения (код BBCH-scale 52-53) на спектрофотометре. Исследования показали, что все изучаемые сорта имеют свои пики накопления суммы хлорофилла a и хлорофилла b, в зависимости от своих биологических особенностей.   У озимой пшеницы максимальное количество суммы двух пигментов пришлось на 2 июля и составило 3,3 мг/г сырой массы листьев. У сорта трититригии Памяти Любимовой пик накопления пигментов был отмечен почти месяц спустя (30 июля). Количество пигментов составило 4,45 мг/г сырой массы. Линия трититригии № 3202 накопила максимальное количество хлорофилла (4,20 мг/г сырой массы листьев) еще позже, чем сорт Памяти Любимовой – 5 августа. Более высокое, по сравнению с озимой пшеницей, содержание фотосинтетических пигментов в клетках листьев трититригии может говорить о её высоких адаптивных характеристиках. А пики накопления хлорофилла, сдвинутые почти на месяц, говорят о продолжительной работе ассимиляционного аппарата и уникальности новой синтетической культуры. Площадь листьев, измеренная прямым линейным способом отличалась у всех изучаемых объектов. Наибольшая площадь листьев – 21,2 тыс. м²/га была отмечена у сорта трититригии Памяти Любимовой 13 июля. Максимальная площадь листьев у линии № 3202 составила 14,4 тыс. м₂/га, далее она постепенно снижалась. Озимая пшеница Рубежная имела значительно более низкую площадь листьев по сравнению с образцами трититригии (максимальная составила 6,1 тыс. м²/га). Далее деятельность активной ассимилирующей поверхности сокращалась.

1. Кабашникова Л. Ф. Фотосинтетический аппарат и потенциал продуктивности хлебных злаков. – Минск: Беларусь. Навука. 2011, 327 с.

2. Ke W., Yin Y., Chen X., Qin B. Chlorophylls, Research Methods of Environmental Physiology in Aquatic Sciences. Springer, Singapore. М-2021, 95-106. DOI: 10.1007/978-981-15-5354-7_11.

3. Li Y. Chen M. Novel chlorophylls and new directions in photosynthesis research. Functional Plant Biology. 2015;№42(6):493-501. DOI: 10.1071/FP14350.

4. Дымова О. В., Головко Т. К. Фотосинтетические пигменты в растениях природной флоры Таежной зоны Европейского Северо-востока России. Физиология растений. 2019;66(3):198-206.

5. Алиев Д. А., Азизов И. В., Казибекова Э. Г. Фотосинтетическая способность и развитие хлоропластов в онтогенезе пшеницы. АН АзССР, Ин-т ботаники. Баку, Элм, 1988, 115 с.

6. Bojovic. B. M., Stajanovic J. Chlorophyll and carotenoid content in wheat cultivars as a function of mineral nutrition. Archives of Biological Science. 2005;57(4):283-290. DOI: 10.2298/ABS0504283B.

7. Matile Р., Hortensteiner S., Thomas H. Chlorophyll degration, Annu Rev Physiol Plant Mol Biol. 1999;50:67-95. DOI: 10.1146/annurev.arplant.50.1.67.

8. Афанасьев Р. А., Белоусова К. В., и др. Влияние основных пигментных систем на обеспеченность растений ярового ячменя азотным питанием. Плодородие. 2013;2(71):15-17.

9. Щуклина О. А., Афанасьев Р. А. Применение фотометрических приборов для экспресс-диагностики азотного питания сельскохозяйственных растений в ранние фазы вегетации. Агрохимический вестник. 2022;2:73-77. DOI: 10.24412/1029-2551-2022-2-014.

10. Shchuklina O., Langaeva N. N., Voronchikhina I. et. al. Application of photometry for crops online diagnostics of the nitrogen nutrition of plants. Agronomy Research. 2021;19(2):595-600. DOI: 10.15159/AR.21.093.

11. Завгородний С. В., Иванова Л. П., и т.д. Морфобиологические и хозяйственно ценные особенности образцов из современной коллекции трититригии (×Trititrigia cziczinii Tzvel.) ГБС РАН. Овощи России. 2022;2:10-14. DOI: 10.18619/2072-9146-2022-2-10-14.

12. Lancashire P. D., Bleiholder, Langeluddecke P. H. et. al. A uniform decimal code for growth stages of crops and weeds. Annals of Applied Biology. 1991;19(3):361-601. DOI: 10.1111/j.1744-7348.1991.tb04895.x.

13. Lichtenthaler H. K. Chlorophylls and Carotenoids: Pigments of Photosynthetic Biomembranes. Methods Enzymology. 1987;48:350-382. DOI: 10.1016/0076-6879(87)48036-1.

14. Трифонова А. А., Борис К. В., Дедова Л. В. и др. Анализ полиморфизма генома представителей синтетического вида ×Trititrigia cziczinii Tsvel методом AFLP. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2018;22(6):648-653. DOI: 10.18699/VJ18.406.

15. Иванова Л. П., Щуклина О. А., Ворончихина И. Н. и др. Перспективы использования новой сельскохозяйственной культуры трититригии (×Trititrigia cziczinii Tzvel.) в кормопроизводстве. Кормопроизводство. 2020;10:13-16 DOI: 10.53859/02352451_2021_35_8_20.

16. Белов В. И., Иванова Л. П., Завгородний С. В. и др. Селекционно-генетические ресурсы отрастающих промежуточных пшенично-пырейных гибридов (2n=56). Бюллетень Главного ботанического сада. 2013;4(199):49-55.

17. Федулов Ю. П., Федулов Ю. В. Содержание и соотношение хлорофиллов в листьях озимой пшеницы в зависимости от агротехнических приёмов её выращивания. Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета. 2009;51(7):240-253.

18. Черкашина И. А., Боме Н. А. Повышение устойчивости сортов Triticum aestivum L. к стрессовым факторам среды с помощью физиологически активных веществ. Плодоводство и ягодоводство России. 2012;34(2):362-368.