Problems of creation of breeding material of the subgenus Cerasus (Mill.) A. Gray with resistance to coccomycosis (Blumeriella jaapii (Rehm) Arx)

Currently, the problem of ecological production is becoming more relevant. One of the ways to solve it is the use of varieties that combine high productivity with sufficient adaptability to environmental conditions, have high taste and commercial qualities of fruits, are resistant to diseases, and significantly affect fruit quality and yield. The purpose of the work is to identify the problem and determine directions in the creation of breeding material for cherries and sweet cherries resistant to coccomycosis based on a literature review. When performing the work, open sources were studied and used, containing information on the distribution, etiology of coccomycosis, methods of its infection and spread, the stability of the assortment of cherries approved for use in the Russian Federation, as well as electronic scientific libraries. It was revealed that the main problem of creating such an assortment of the subgenus Cerasus (Mill.) A. Gray is the ability of Blumeriella jaapii (Rehm) Arx to overcome the resistance of the host, which is determined by its reproductive and population characteristics. Resistance to B. jaapii in the breeding material of the subgenus under study usually dominates and is controlled mono-, oligo-, and polygenic. It can be obtained with the involvement of donors of resistance to cocomycosis (13 species) in the selection process. Modern varieties and forms were created with the participation of a donor – Prunus maackii Rupr. and P. lannesiana (Carr) E. H. Wilson. The use of genetic methods in the work on the creation of breeding material of the subgenus Cerasus with resistance to coccomycosis will allow its intensification due to more accurate selection of forms with this trait.F

1. Eremina O. V., Eremin V. G. Increasing resistance to coccomycosis in sweet cherry by applying distant hybridization with cherry species. BIO Web of Conferences. EDP Sciences. 2022;47:02006. doi: 10.1051/bioconf/20224702006.

2. Ленивцева М. С., Кузнецова А. П., Соколов О. А. Встречаемость рас возбудителя коккомикоза–Blumeriella jaapii (Rehm) v. Arx. Плодоводство и ягодоводство России. 2012;34(1):439-445.

3. Кузнецова А. П. и др. Разработка стратегических подходов выделения форм с полигенным типом устойчивости к коккомикозу. Плодоводство и ягодоводство России. 2020;Т.59:301-307. DOI: 10.31676/2073-4948-2019-59-301-307.

4. Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию. Т. 1. «Сорта растений» (официальное издание). М.: ФГБНУ «Росинформагротех», 2022, 646 с.

5. Змушко А. А., Волосевич Н. Н. Искусственное заражение вишни in vitro возбудителем коккомикоза. Плодоводство. 2022;26(1):165-174.

6. Holb I. J. Some biological features of cherry leaf spot (Blumeriella jaapii) with special reference to cultivar susceptibility. International Journal of Horticultural Science. 2009;15(1-2):91-93. DOI: 10.31421/IJHS/15/1-2/818.

7. Howell G. S., & Stackhouse S. S. The Ef ect of Defoliation Time on Acclimation and Dehardening in Tart Cherry (Prunus cerasus L.). Journal of the American Society for Horticultural Science. 1973;98(2):132-136.

8. Keitt G. W., Blodgett E. C., Wilson E. E., & Magie R. O. The Epidemiology and Control of Cherry Leaf Spot. Wisc. Agric. Exp. Stn. Res. Bull. 1937;132:1-117.

9. McDonald B. A., & Linde C. Pathogen Population Genetics, Evolutionary Potential, and Durable Resistance. Annual Review of Phytopathology. 2002;40:349-379. DOI: 10.1146/annurev.phyto.40.120501.101443.

10. Proffer T. J., Berardi R., Ma Z., Nugent J. E., Ehret G. R., McManus P. S., Jones A. L., Sundin. G. W. Occurrence, Distribution, and Polymerase Chain Reaction-Based Detection of Resistance to Sterol Demethylation Inhibitor Fungicides in Populations of Blumeriella jaapii in Michigan. Phytopathology. 2006;96(7):709-717. DOI: 10.1094/PHYTO-96-0709.

11. Holb I. J. Eff ect of Sanitation Treatments on Leaf Litter Density and Leaf Spot Incidence in Integrated and Organic Sour Cherry Orchards. Plant Disease. 2013;97:891-896. DOI: 10.1094/PDIS-09-12-0811-RE.

12. Andersen K. L. Comparison of resistant, tolerant, and susceptible host responses to Cherry Leaf Spot and assessment of trait inheritance. Michigan State University, 2016, 96. doi: 10.25335/M5Q18Z.

13. Ленивцева М. С., Радченко Е. Е., Кузнецова А. П. Генетическое разнообразие сортов косточковых культур (род Prunus L.), устойчивых к коккомикозу. Сельскохозяйственная биология. 2017;52(5):895-904. DOI: 10.15389/agrobiology.2017.5.895rus.

14. Гуляева А. А., Джигадло Е. Н., Джигадло М. И. Клоновые подвои для вишни и черешни селекции ГНУ ВНИИСПК. Селекция и сорторазведение садовых культур. 2007, 74-80.

15. Упадышева Г. Ю. Интродукция клоновых подвоев – важнейший резерв повышения эффективности выращивания косточковых культур в Нечерноземье. Плодоводство и ягодоводство России. 2012;34(2):343-353.

16. Еремин Г. В. Сбор, изучение и использование генофонда дикорастущих видов рода Prunus L. Плодоводство и виноградарство юга России. 2015;36:14-25.

17. Малиновская А. М. Коккомикоз вишни: проблемы и перспективы в селекции. Плодоводство. 2022;22.1:301-308.

18. Горбачева Н. Г. Оценка полиплоидов яблони и отдаленных гибридов вишни как исходных форм в селекции. Автореф. канд. дис. Орёл., 2011, 22 с.

19. Кружков А. В. Селекция вишни на устойчивость к коккомикозу. Плодоводство и ягодоводство России. 2013;36(1):342-344.

20. Савельев Н. И. и др. Генофонд ФГБНУ ВНИИГиСПР и его использование в селекции. Плодоводство и ягодоводство России. 2016;47:274-277.

21. Кузнецова А. П., Коваленко Н. Н. Использование отдаленной гибридизации в селекции вишни и черешни. Селекционно-генетическое совершенствование породно-сортового состава садовых культур на Северном Кавказе. 2005, 209-212.

22. Коваленко Н. Н. Создание инновационных клоновых подвоев для сортов рода Cerasus Mill. (Prunus cerasus L.). Садоводство и виноградарство. 2023;1:11-17. doi: 10.31676/0235-2591-2023-1-11-17.

23. Данилова А. А., Морозова Н. Г., Симонов В. С. Научная школа Хасана Каримовича Еникеева по селекции и сортоизучению косточковых культур. Плодоводство и ягодоводство России. 2015;42:34-43.

24. Andersen K. L. et al. Assessment of the inheritance of resistance and tolerance in cherry (Prunus sp.) to Blumeriella jaapii, the causal agent of cherry leaf spot. Plant pathology. 2018;67(3):682-691. doi: 10.1111/ppa.12765.

25. Малиновская А. М., Кухарчик Н. В. Оценка устойчивости форм вишни к коккомикозу : сб. трудов междунар. науч. конференции, посвященной 90-летию кафедры плодоовощеводства и 170-летию Белорусской государственной сельскохозяйственной академии «Плодоовощеводство и декоративное садоводство. Состояние и перспективы развития», 23-25 июня, Горки, 2010 г., Горки, 2011, 141-145.