Влияние применения гибберелловой кислоты на морфогенез представителей рода Hydrangea L.

Современное декоративное садоводство трудно представить без красиво цветущих кустарников. Один из них – гортензия. В России эта культура является одной из самых востребованных в декоративном садоводстве. Однако существуют некоторые трудности в получении большого количества посадочного материала новых и высокодекоративных сортов. Поэтому так важно совершенствовать эффективные технологии размножения изучаемой культуры. Метод клонального микроразмножения позволяет в короткие сроки и в больших количествах получать выровненный посадочный материал, идентичный исходным генотипам. Представители рода Hydrangea L. успешно культивируются в условиях in vitro. Несмотря на значительное количество исследований, имеются лишь единичные сведения о сравнительной оценке морфогенетического потенциала различных видов рода Hydrangea L. в зависимости от концентрации регуляторов роста. В практике культивирования растений в условиях in vitro применяют различные регуляторы роста. На этапе собственно микроразмножения для активации роста пазушных почек применяют питательные Murashige and Skoog (MS), Quoirin, Lepoivre (QL), дополненные 6-бензиламинопурином (6-БАП), гибберелловой кислотой, кинетином, зеатином и т. д. Влияние гиббереллинов на выращивание гортензии в условиях in vitro мало изучено. Целью научной работы является исследование воздействия гибберелловой кислоты на регенерацию побегов представителей рода Hydrangea L. Проведена работа по изучению влияния гибберелловой кислоты (ГК) в концентрациях 0,5 и 1 мг/л. Положительные результаты действия фитогормонов на коэффициент размножения представителей вида Hydrangea macrophylla Th unb. (H. macrophylla) были получены при применении ГК в концентрации 1 мг/л, коэффициент размножения – 12,0. Высота микропобегов увеличилась на 25 % при применении 1 ГК в концентрации 1 мг/л для представителей вида Hydrangea paniculatSiebold (H. paniculata). Согласно исследованиям 2020 г. наилучшие результаты применения различных минеральных основ получены при культивировании в условиях in vitro представителей рода Hydrangea L. на питательной среде QL с добавлением 6-БАП в концентрации 0,3 мг/л. Именно поэтому в качестве контроля была взята питательная среда QL. После применения ГК регенеранты высаживали на адаптацию в условия фитотрона. Наилучшей приживаемостью характеризовался сорт ‘Peppermint’ вида H. macrophylla (90 %) после применения питательной среды, содержащей ГК в концентрации 1 мг/л. Сорт ‘Magical Candle’ одинаково хорошо адаптировался независимо от концентрации ГК.

1. Зубик И. Н. Использование гортензии древовидной (Hydrangea arborescens L.) для создания устойчивых садовых композиций. Вестник ландшафтной архитектуры. 2020;24:18-21.

2. Маляровская В. И. Историко-систематический обзор представителей рода Hydrangea. Вестник ИрГСХА. 2011;44-8:75-79.

3. Маляровская В. И., Белоус О. Г. Изменение ферментативной активности Hydrangea macrophylla (Th unb.) Ser. в зависимости от гидротермических условий влажных субтропиков России. Субтропическое и декоративное садоводство. 2018;65:160-166.

4. Тимонин А. К., Соколов Д. Д., Шипунов А. Б. Ботаника: в 4-х т.: учебник. М.: ИЦ «Академия». 2007, 272 с.

5. Murzabulatova F. K. et al. Anatomical Structure and Phytochemical Analysis of the Leaf, Stem and Root of Hydrangea Tree (L.), Izvestiâ Akademii nauk. Rossijskaâ akademiâ nauk. Seriâ biologičeskaâ. 2023;3:269-277.

6. Маляровская В. И., Белоус О. Г. Фотосинтетическая активность листьев Hydrangea macrophylla Ser. в условиях влажных субтропиков России. Субтропическое и декоративное садоводство. 2017;61:167-173.

7. Sebastian T. K., Heuser C. W. In vitro propagation of Hydrangea quercifolia Bartr. Sci. Hort. 1987;31:303-9. DOI: 10.1016/0304-4238(87)90056-2.

8. Ledbetter D. I., Preece J. E. Thidiazuron stimulates adventitious shoot production from Hydrangea quercifolia Bartr. leaf explants. Scientia Horticulturae. 2004;101:121-126.

9. Калагова М. А. Cтимулятор роста гиббереллин: Студенческая наука – агропромышленному комплексу: сб. трудов междунар. науч. конференции, 4-5 апреля, Владикавказ, 2019 г., 92-93.

10. Иванова Н. Н., Митрофанова И. В., Митрофанова О. В. Методические основы клонального микроразмножения некоторых декоративных культур. Биология растений и садоводство: теория, инновации. 2014;138:57-101.

11. Маляровская В. И. Размножение Hydrangea macrophylla Ser. в культуре in vitro. Плодоводство и ягодоводство России. 2017;51:56-62.

12. Savona M., Sacco E., Ruff oni B. Improving micropropagation performances in Hydrangea spp.: Temporary immersion shoot culture and induction of morphogenetic events, VII International Symposium on In Vitro Culture and Horticultural Breeding, Gent, 2011, 457-464.

13. Xiao J., Guo, G. & Jeong B. R. Iron supplement-enhanced growth and development of Hydrangea macrophylla in vitro under normal and high pH. Cells. 2021;10(11):3151.

14. Jung H. H., Park K. Y., Kwon O. H., & Yoo B. S. Eff ect of Rooting Promoters on the Rooting and Growth of Cuttings in Several Flowering Shrubs. Journal of People, Plants and Environment. 2018;20(5):503-510.

15. Бутенко Р. Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе: учебник. М.: ФБк-Пресс, 1999, 160, 3.

16. Ахметова Л. Р., Крахмалева И. Л., Молканова О. И. Биотехнологические методы размножения декоративных сортов представителей рода Hydrangea L. Достижения науки и техники АПК. 2020;34(11):79-82.

17. Raeva-Bogoslovskaya E., Molkanova O. Eff ects of gibberellic acid on the regeneration of Amelanchier Medik. cultivars in vitro. AIP Conference Proceedings. AIP Publishing, 2023;2921:1.

18. Ахметова Л. Р., Молканова О. И. Особенности клонального микроразмножения представителей Hydrangea macrophylla Thunb. Научный альманах. 2019;3:119-122.

19. Исачкин А. В., Крючкова В. А., Богданова В. Д. Основы научных исследований в садоводстве: учебно-методическое пособие. М.: МЭСХ, 2021, 62 с.

20. Рындин А. В. и др. Использование физиолого-биохимических методов для выявления механизмов адаптации субтропических, южных плодовых и декоративных культур в условиях субтропиков России. Сельскохозяйственная биология. 2014;3:40-48.

21. Орлова Е. Е., Вдовина О. А. Влияние субстратов на укоренение Sedum refl exum L. Вестник ландшафтной архитектуры. 2019;20:44-47.

22. Малаева Е. В., Коновалова Л. Н., Молканова О. И. Использование биотехнологических методов для сохранения и поддержания коллекции актинидии в культуре in vitro. Плодоводство и ягодоводство России. 2009;21:212-218.