Preview

Pomiculture and small fruits culture in Russia

Advanced search

INFLUENCE OF SUCCINIC AND CITRIC ACIDS ON THE GRAPE MORPHOPHYSIOLOGICAL DEVELOPMENT AT THE PLANT REARING STAGE AFTER MICROPROPAGATION

https://doi.org/10.31676/2073-4948-2019-57-74-82

Abstract

Research aim was to study the influence of foliar treatment with 0.2% succinic (SA) and citric acids (CA) on the morphological and biochemical parameters of the grape plant development at the plant rearing stage. A plant-specific response to biologic active substances was observed: the stem length of Marquette variety was higher after pretreatment of SA (29.1 cm), in CA pretreatment significantly inhibited the growth of the stem (8.8 cm) of Bianca variety compared to SA pretreatment (10.5 cm) and control (14.6 cm). SA and CA pretreatments had a significant effect on the accumulation of monosaccharides, sucrose and chlorophylls b. The influence of CA was to inhibit the growth of the stem and to activate the accumulation of phenolic compounds as compared to the control and SA. The effect of biologically active substances was prolonged, persisting for 24 weeks of research.

About the Authors

T. A. Krasinskaya
Institute for Fruit Growing, International Sakharov Environmental Institute of Belarusian State University
Belarus


I. N. Ostapchuk
Institute for Fruit Growing
Belarus


References

1. Никитина Е. В., Романова Н. К. Янтарная кислота и её соли как индивидуальные антиоксиданты и генопротекторы // Вестник Казанского технологического университета, 2010. — № 10. — С. 375–381.

2. Тарчевский И. А. Сигнальные системы клеток растений. — М.: Наука, 2002. — 294 с.

3. Верещагин А. Л. и др. Биологическая активность сверхмалых концентраций ряда природных органических кислот — интермедиатов цикла Кребса // Известия ВУЗов. Прикладная химия и биотехнология, 2012. — №2(3). — С. 72–75.

4. Тютерев С. Л. Экологически безопасные индукторы устойчивости растений к болезням и физиологическим стрессам // Вестник защиты растений, 2015. — 1(83). — С. 3–13.

5. Krasinskaya T., Kukhartchyk N., Matushevich V. The effect of ion exchange substrate and succinic acid on ex vitro adaptation of the cherry rootstock VSL-2 (Prunus fructicosa Pall. x P. lannesiana Carr.) // Acta Horticulturae, 2008. — Vol. 795. — P. 401–408.

6. Поликсенова В. Д. Индуцированная устойчивость растений к патогенам и абиотическим стрессовым факторам (на примере томата) // Вестник БГУ, 2009. — Сер. 2., № 1. — С. 48–60.

7. Карпун Н. Н., Янушевская Э. Б., Михайлова Е. В. Механизмы формирования неспецифического индуцированного иммунитета у растений при биогенном стрессе (обзор)// Сельскохозяйственная биология. — 2015. — Т. 50, № 5. — С. 540-549.

8. Кильчевский А. В. и др. Использование регуляторов роста-адаптагенов при переносе микрорастений земляники и вишни в условиях in vivo // Актуальные проблемы генетики: материалы 2 конф. Москов. о-ва генетиков и селекционеров им. Н.И. Вавилова, Москва, 20–21 фев. 2003 г. — М., 2003. — Т. 2. — С. 135-136.

9. Винтер М. А. Совершенствование приемов оздоровления и клонального микроразмножения сливы домашней на основе оценки адаптивного потенциала сортов: дисс … к. с.-х. наук. — Краснодар, 2018. — 170 с.

10. Бунцевич Л. Л., Киян А. Т., Костюк М. А. Воздействие ранее не применявшихся в клональном микроразмножении регуляторов роста на микропобеги сливы in vitro // Научный журнал КубГАУ, 2016. — №115(01). — С. 1-8.

11. Panaia M. et al. Micropropagation of the critically endangered Western Australian species, Symonanthus bancroftii (F. Muell.) L. Haegi (Solanaceae) // Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 2000. — Vol. 63. — P. 23-29.

12. Arya V., Shekhawat N. S., Singh R. P. Micropropagation of Leptadenia reticulata — a medicinal plant // In vitro Cell. Dev. Biol.—Plant., 2003. — Vol. 39. — P. 180-185.

13. Ермаков И. А. и др. Спектрофотометрическое определение хлорофиллов а и в и каротиноидов // Методы биохимического исследования растений / Под ред. А. И. Ермакова. — Л.: «Агропромиздат», 1987. — С. 107–108.

14. Карманенко Н. М., Казанцева О. Ф. Колориметрический метод определения сахаров в растительном материале // Агрохимия, 1986. — № 1. — С. 107–110.

15. Колориметрический метод определения общего содержания фенольных соединений с использованием реактива Фолина-Дениса. Исследования биологически активных веществ плодов: метод. указания / Под ред. Г. Б. Самородовой-Бианки. — Л.: ВАСХНИЛ ВИР, 1979 . — С. 20–22.


Review

For citations:


Krasinskaya T.A., Ostapchuk I.N. INFLUENCE OF SUCCINIC AND CITRIC ACIDS ON THE GRAPE MORPHOPHYSIOLOGICAL DEVELOPMENT AT THE PLANT REARING STAGE AFTER MICROPROPAGATION. Pomiculture and small fruits culture in Russia. 2019;57(1):74-82. (In Russ.) https://doi.org/10.31676/2073-4948-2019-57-74-82

Views: 1374


Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2073-4948 (Print)