Preview

Плодоводство и ягодоводство России

Расширенный поиск
Доступ открыт Открытый доступ  Доступ закрыт Только для подписчиков

ОСОБЕННОСТИ РАЗВИТИЯ ЭКСПЛАНТОВ RUBUS IDAEUS L. И RIBES NIGRUM L. ПЕРСПЕКТИВНЫХ СОРТОВ СЕЛЕКЦИИ ФГБНУ ФНЦ САДОВОДСТВА НА ЭТАПЕ ВВЕДЕНИЯ В КУЛЬТУРУ IN VITRO

https://doi.org/10.31676/2073-4948-2020-63-44-52

Полный текст:

Аннотация

Приведены результаты исследований особенностей развития эксплантов малины (Rubus idaeus L.) и смородины черной (Ribes nigrum L.) на этапе введения в культуру in vitro. Анализ полученных данных позволяет сделать вывод, что наиболее эффективным режимом стерилизации для эксплантов малины является 7 %-ный раствор гипохлорита натрия с экспозицией 16 минут, а для смородины черной — 5 %-ный раствор лизоформина с экспозицией 20 минут. Приживаемость эксплантов малины варьировала в пределах 62,5–100,0, а смородины черной — 66,7–100,0 % в зависимости от сорта. Больший процент прижившихся эксплантов смородины черной был отмечен у сортов ‘Миф’ и ‘Гамаюн’, малины — ‘Скромница’, ‘Беглянка’, ‘Геракл’, ‘Гусар’, ‘Солнышко’, ‘Метеор’ и ‘Киржач’. В исследованиях изучили влияние регуляторов роста цитокининовой природы: 6–бензиламинопурин, тидиазурон и кинетин. Сорта малины ‘Геракл’, ‘Пересвет’ и ‘Солнышко’, культивируемые на питательной среде с добавлением кинетина в концентрации 0,5 мг/л, характеризовались длиной микропобегов 14,0, 9,0 и 12,5 мм, соответственно. Для сортов ‘Скромница’ и ‘Гусар’ в питательные среды было более эффективно добавлять 6–БАП и тидиазурон. В этих вариантах длина микропобегов составила у сорта ‘Скромница’ 12,8 и 11,0 мм, у сорта ‘Гусар’ — 14,0 и 11,4 мм, соответственно. Исследование особенностей развития эксплантов смородины черной показало, что на сорта ‘Чародей’, ‘Бармалей’ и ‘Миф’ кинетин оказал большее стимулирующее воздействие в ростовых процессах. Наибольший показатель длины микропобегов составил 16,7 и 12,5 мм у сортов смородины черной "Чародей" и "Миф", соответственно. Общая оценка полученных данных по изучению действия стерилизующих веществ и модификаций питательных сред на основе цитокининов различной природы при введении в культуру in vitro ягодных культур позволяет сделать вывод, что сортовые особенности растений оказывают значительное влияние на  регенерационную способность эксплантов малины и смородины черной.

Об авторах

О. В. Вершинина
ФГБНУ «Федеральный научный селекционно-технологический центр садоводства и питомниководства»
Россия

нс, канд. с.-х. наук

Москва



И. А. Бъядовский
ФГБНУ «Федеральный научный селекционно-технологический центр садоводства и питомниководства»
Россия
снс, канд. с.-х. наук

Москва



Список литературы

1. Молканова О. И., Егорова Д. А., Мелещук Е. А. Использование биотехнологических методов в сохранении и ускоренном размножении ягодных культур. Селекция и сорторазведение садовых культур. 2018;5(1):73-76.

2. Муратова С. А., Шорников Д. Г., Янковская М. Б. Размножение садовых культур in vitro: методические рекомендации. Мичуринск-наукоград РФ, 2008, 68 с.

3. Кухарчик Н. В., Кастрицкая М. С., Семенас С. Э., Колбанова Е. В. Размножение плодовых и ягодных растений в культуре in vitro. Минск, 2016, 208 с.

4. Малиновская А. М. Особенности размножения in vitro смородины красной. Плодоводство, 2009;21:246-250.

5. Райков И. А. Совершенствование клонального микроразмножения межвидовых форм смородины черной и малины ремонтантного типа: автореф. дисс. … к. с.-х. наук. Брянск, 2012. 20 с.

6. Милехина Н. В., Сковородников Д. Н. Влияние производных дифенилмочевины на введение в культуру in vitro ягодных культур. Вестник Брянской государственной сельскохозяйственной академии. 2017;4(62):30-34.

7. Сковородников Д. Н. Клональное микроразмножение в ускорении селекционного процесса смородины черной. Научные ведомости Белгородского государственного университета. Серия: Естественные науки. 2012;21(140)21/1:58-61.

8. Маркова М. Г., Сомова Е. Н. Оптимизация этапа введения в культуру ткани в клональном микроразмножении малины. Селекция и семеноводство. 2016;3(77):41-43.

9. Высоцкий В. А., Алексеенко Л. В. Методика регенерации плодовых и ягодных растений в культуре эксплантов различного происхождения. М., 2008, 25 с.


Для цитирования:


Вершинина О.В., Бъядовский И.А. ОСОБЕННОСТИ РАЗВИТИЯ ЭКСПЛАНТОВ RUBUS IDAEUS L. И RIBES NIGRUM L. ПЕРСПЕКТИВНЫХ СОРТОВ СЕЛЕКЦИИ ФГБНУ ФНЦ САДОВОДСТВА НА ЭТАПЕ ВВЕДЕНИЯ В КУЛЬТУРУ IN VITRO. Плодоводство и ягодоводство России. 2020;63(1):44-52. https://doi.org/10.31676/2073-4948-2020-63-44-52

For citation:


Vershinina O.V., Bjadovskiy I.A. PECULIARITIES OF THE DEVELOPMENT OF EXPLANTS RUBUS IDAEUS L. AND RIBES NIGRUM L. PROMISING VARIETIES OF BREEDING OF FEDERAL RESEARCH CENTER FOR HORTICULTURE AT THE STAGE OF INTRODUCTION TO CULTURE IN VITRO. Pomiculture and small fruits culture in Russia. 2020;63(1):44-52. (In Russ.) https://doi.org/10.31676/2073-4948-2020-63-44-52

Просмотров: 67


ISSN 2073-4948 (Print)