Preview

Плодоводство и ягодоводство России

Расширенный поиск
Доступ открыт Открытый доступ  Доступ закрыт Только для подписчиков

БИОХИМИЧЕСКИЙ СОСТАВ КОРЫ МУЖСКИХ И ЖЕНСКИХ РАСТЕНИЙ ACTINIDIA KOLOMIKTA

https://doi.org/10.31676/2073-4948-2020-63-89-102

Полный текст:

Аннотация

Проблема распознавания пола у Actinidia Lindl. связана с отсутствием морфологических и анатомических маркеров пола у ювенильных растений, и до первого цветения сеянцев невозможно определить пол каждого растения. Исследование посвящено поиску различий физиолого-биохимических показателей мужских и женских растений многолетней двудомной культуры актинидии коломикта (Actinidia kolomikta) для ранней диагностики пола ее растений. Методом спектрофотометрии определено количественное содержание фотосинтетических пигментов и сумма фенольных соединений (с использованием реактива Фолина-Чокольтеу). Установлено, что в течение исследуемого периода количество хлорофилла a и b в коре мужского растения в 1,1–2 раза больше, чем в коре женского. Содержание хлорофилла a в 1,1–2,9 раза больше, чем хлорофилла b. Достоверные различия по содержанию суммы каротиноидов и сумме фенольных соединений в коре мужских и женских растений актинидии отсутствуют. Методом газовой хроматографии с массспектрометрическим детектированием исследован качественный и количественный состав метаболитов коры женской и мужской формы A. kolomikta. В экстрактах коры было определено 52 химических соединения различной природы: из них 18 органических кислот, 16 углеводов, 5 лактонов, 4 соединения фенольной природы, 5 соединений из группы органических спиртов, 3 соединения, относящихся к жирным 
кислотам, а также аукубин. В коре мужского растения актинидии содержится на 8 органических кислот больше, чем в коре женского. В результате проведенного сравнительного анализа установлено наличие в исследуемых образцах общих и специфичных вторичных метаболитов. Приведенные в работе различия качественного состава метаболомных профилей и количества фотосинтетических пигментов коры однолетних побегов мужских и женских растений могут быть использованы в дальнейшем как биологические маркеры для ранней диагностики пола у
A. kolomikta.

Об авторах

Д. В. Панищева
ФГБНУ ФНЦ Садоводства
Россия
мнс, аспирант

Москва

 


С. м Мотылева
ФГБНУ ФНЦ Садоводства
Россия
внс, канд. с.-х. наук, доцент

Москва



Н. В. Козак
ФГБНУ ФНЦ Садоводства
Россия
внс, канд. с.-х. наук

Москва



Список литературы

1. Duarte A. M., Caixeirinho D., Miguel M. G. et al. Organic acids concentration in citrus juice from conventional versus organic farming, Acta Horticultural. 2012;933:601-606.

2. Колбасина Э. И., Соловьёва Л. В., Тульнова Н. Н. и др. Культурная флора России: Актинидия. Лимонник. М.: Россельхозакадемия, 2007, 327 с.

3. Солдатов С. А. Влияние селената натрия на рост, развитие и проявление пола у двудомных растений конопли (Cannabis sativa L.): автореферат. М.: Институт физиологии растений имени К. А. Тимирязева РАН, 2005, 32 с.

4. Заплатин Б. П., Хрянин В. Н. Модель линейного программирования экспрессии пола растений, Известия ПГПУ «Естественные науки». 2006;1(5):65-71.

5. Anita G. et al. Marker assisted sex differentiation in dioecious plants, Journal of Pharmacy Research. 2015;9(8):531-549.

6. Колбасина Э. И. Актинидии и лимонник в России (биология, интродукция, селекция). М.: Россельхозакадемия, 2000, 264 с.

7. Gill G. P., Harvey C. F., Gardner R. C., Fraser L. G. Development of sex-linked PCR markers for gender identification in Actinidia, Theoretical and Applied Genetics J. 1998;97:439-445.

8. Малаева Е. В. Биологические и молекулярно-генетические особенности дальневосточных видов рода Actinidia Lindl.: автореферат. М.: ФГОУ ВПО РГАУ-МСХА им. К. А. Тимирязева, ГУ «Волгоградский региональный ботанический сад», 2008, 23 с.

9. Hale I., Melo A. T. O., Gustafson H. Sex-linked molecular markers for two cold-hardy kiwifruit species, Actinidia arguta and A. kolomikta, European Journal of Horticultural Science. 2018;83(4):236-246. DOI: 10.17660/eJHS.2018/83.4.4

10. Seal A. G., Ferguson R. A., Nihal de Silva H., Zhang J.-L. The effect of 2n gametes on sex ratios in Actinidia, Sex Plant Reprod J. 2012;25:197-203. DOI 10.1007/s00497-012-0191-6.

11. Казарян В. В., Оганесян Л. Н. Сезонное изменение содержания хлорофилла в побегах древесных интродуцентов как адаптивный процесс, Биолог. ж. Армении. 1989;12(42): 1091-1093.

12. Bossard C. C., Rejmanek M. Why have green stems?, Functional Ecology. 1992;6:197-205.

13. Тихонов К. Г., Христин М. С., Климов В. В., Сундырева М. А., Креславский В. Д., Сидоров Р. А., Цыдендамбаев В. Д., Савченко Т. В. Структурные и функциональные особенности фотосинтетического аппарата хлорофилл-содержащих тканей виноградной лозы, Физиология растений. 2017;64(1):69-80.

14. Аксенова Ю. Б., Лапко И. В., Кузнецова О. В и др. Сравнительный анализ качественного и количественного состава коры коричника (Cinnamomum) разных видов, Химия растительного сырья. 2018;3:159-167. DOI: 10.14258/jcprm.2018033805

15. Курченко В. П., Ризевский С. В., Эсауленко М. А., Цыганков В. Г., Бондарук А. М., Филонюк В. А., Спиридович Е. В. Биологически активные вещества в коре различных видов сирени, Молекулярно-генетические и биотехнологические основы получения и применения синтетических и природных биологически активных веществ (Нарочанские чтения — 11): материалы Международной научно-практической конференции (20–23 сентября 2017 г.) / БГУ, СКФУ, САФУ. — Минск — Ставрополь: Белорусский государственный университет, Северо-Кавказский федеральный университет, 2017: 46–53. URL: http://elib.bsu.by/handle/123456789/188827 Ссылка активна на 8.06.2020.

16. Мотылева С. М., Козак Н. В., Куликов И. М. Низкомолекулярные метаболиты в водном экстракте плодов Actinidia Lindl., Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2018;21(10):91-97. DOI: 10.29296/25877313-2018-10-18.

17. Макарова Н. В., Соболев Г. И., Дмитриева А. Н. Изучение химического состава и антиоксидантной активности Актинидии, Известия ВУЗов, Прикладная химия и Биотехнология. 2012;2(3):39-42.

18. Lichtenthaler H. K., Buschmann C. Chlorophylls and carotenoids: measurement and characterization by UV-VIS spectroscopy, current protocols in Food Analytical Chemistry. 2001; F4.3.1–F4.3.8.

19. Руководство по методам контроля качества и безопасности биологически активных добавок к пище. — М.: Федеральный центр Госсанэпиднадзора Минздрава России. 2004, 240 с.

20. Лебедев А. Т. Масс-спектрометрия в органической химии. М.: БИНОМ Лаборатория знаний. 2003:120-243.

21. Годнев Т. Н., Ротфарб Р. М., Ходасевич Э. В., Акулович Н. К. Вопросы биосинтеза хлорофилла и каротиноидов: материалы сборника Биохимия и биофизика фотосинтеза. М.: Академия наук СССР, научный совет по проблеме «Фотосинтез». 1965:126-146.

22. Saveyn A., Steppe K., Ubierna N., Dawson T. E. Woody tissue photosynthesis and its contribution to trunk growth and bud development in young plants, Plant, cell & environment. 2010;33(11):1949-1958. DOI:10.1111/j.1365-3040.2010.02197.x

23. Гавриленко В. Ф., Жигалова Т. В. Большой практикум по фотосинтезу: Учеб. пособие для студ. вузов; под редакцией И. П. Ермакова. М.: Издательский центр «Академия», 2003, 256 с.

24. Химическая энциклопедия/Редкол.: Кнунянц И. Л. и др. — М.: Советская энциклопедия, 1988, Т.1 (Абл-Дар), 623 с.


Для цитирования:


Панищева Д.В., Мотылева С.м., Козак Н.В. БИОХИМИЧЕСКИЙ СОСТАВ КОРЫ МУЖСКИХ И ЖЕНСКИХ РАСТЕНИЙ ACTINIDIA KOLOMIKTA. Плодоводство и ягодоводство России. 2020;63(1):89-102. https://doi.org/10.31676/2073-4948-2020-63-89-102

For citation:


Panishcheva D.V., Motyleva S.M., Kozak N.V. BIOCHEMICAL COMPOSITION OF THE BARK OF ACTINIDIA KOLOMIKTA MALE AND FEMALE PLANTS. Pomiculture and small fruits culture in Russia. 2020;63(1):89-102. (In Russ.) https://doi.org/10.31676/2073-4948-2020-63-89-102

Просмотров: 62


ISSN 2073-4948 (Print)