Оценка эффективности введения в культуру in vitro некоторых сортов смородины черной (Ribes nigrum)

В результате научно-исследовательской работы по заказу Министерства сельского хозяйства Российской Федерации сравнивали эффективность применения различных режимов стерилизации латеральных почек смородины черной на этапе введения в стерильную культуру in vitro. Исследования проводились на базе учебно-производственной лаборатории сельскохозяйственной биотехнологии ФГБОУ ВО Костромская ГСХА. Латеральные почки заготавливали с одревесневших побегов базисных растений смородины сортов ‘Брянский Агат’, ‘Вера’ и ‘Дебрянск’, полученных в ФГБНУ ФНЦ Садоводства в 2023 г. Все сорта обладали достаточно высоким морфогенетическим потенциалом для введения в культуру in vitro. Установлен оптимальный стерилизующий агент: 0,05 % раствор хлоргексидина биглюконата (ХБ) в экспозиции 10 минут. Жизнеспособность меристем в зависимости от помологического сорта составляла 53,3-66,7 %. Использование 5,0 % раствора гипохлорита натрия (ГН) в экспозициях 5, 10, 15 минут увеличивало жизнеспособность меристем от 53,3 до 73,3 %. Максимальный уровень контаминации достигнут при совместном применении обоих стерилизующих агентов (ГН и ХБ) в экспозиции 5 минут – 50,0-70,0 %. Максимальное количество морфогенноактивных меристем получено после стерилизации 0,05 % раствором (ХБ) в экспозициях 10 и 15 минут. 

1. Милехина Н. В. Влияние производных дифенилмочевины на введение в культуру in vitro ягодных растений, Вестник Брянской государственной сельскохозяйственной академии. 2017;4(62):30-34. EDN ZDAXLR.

2. Хромова Т. М., Ташматова Л. В., Мацнева О. В., Шахов В. В. Некоторые аспекты введения в культуру in vitro сортов смородины черной селекции ВНИИСПК, Вестник ОрелГАУ. 2020;4(85): 31-36.

3. Ряго Н. В. Оптимизация биотехнологических методов на первых этапах культивирования смородины красной в культуре in vitro: Современное состояние, проблемы и перспективы развития аграрной науки: Сборник материалов IX международной научной конференции, 23-27 сентября, Симферополь 2024 г. Общество с ограниченной ответственностью «Издательство Типография «Ариал», Симферополь, 2024, 70-71. DOI: 10.5281/zenodo.13911206. EDN HFAEIW.

4. Ряго Н. В. Регенерационная способность генотипов подрода Ribesia Berl. в культуре in vitro, Аграрный вестник Урала. 2024;24(10):1345-1358. DOI: 10.32417/19974868-2024-24-10-1345-1358. EDN WWQABP.

5. Ряго Н. В. Влияние состава питательных сред на приживаемость эксплантов смородины красной на этапе введения в культуру in vitro, Селекция и сорторазведение садовых культур. 2022;9(1):90-96. DOI: 10.24411/25000454_2022_0117. EDN MQXTNT.

6. Камбарова А. и др. Получение асептически чистой культуры смородины Мейера для введения в культуру in vitro, Селекция и сорторазведение садовых культур. 2020;7(1-2):80-82. DOI: 10.24411/2500-0454-2020-11220. EDN NWGTEJ.

7. Сковородников Д. Н. Особенности клонального микроразмножения смородины черной. Плодоводство и ягодоводство России. 2011;26:395-400. EDN NUYLHT.

8. Райков И. А. Оптимизация размножения смородины черной в условиях in vitrо: Биологизация земледелия в Нечерноземной зоне России: сборник научных трудов Международной научно-практической конференции, посвященной 30-летию Брянской ГСХА и 70-летию со дня рождения Заслуженного деятеля науки РФ, доктора с.-х.н., профессора В.Ф. Мальцева, 19 февраля, Брянск 2009 г. Выпуск 4. Брянск: Издательство Брянской ГСХА, 2010, 314-319. EDN TWBVBF.

9. Гусева К. Ю. Клональное микроразмножение смородины черной (Ribes nigrum L.), Проблемы ботаники Южной Сибири и Монголии. 2020;19-(2):5-10. DOI: 10.14258/pbssm.2020064. EDN SOGLQM.

10. Панкратова А. А., Толоконцев Д. В., Кулева И. С. Оценка эффективности введения в культуру in vitro смородины черной сорта Д ебрянск, Аграрный вестник Нечерноземья. 2024;3(15):23-27. DOI: 10.52025/2712-8679_2024_03_23. EDN IQXABM.

11. Калашникова Е. А. Клеточная инженерия растений: Учебник и практикум. 2-е издание М.: Издательство Юрайт, 2020, 333. (Высшее образование). ISBN 978-5-53411790-5. EDN LOUOLP.

12. Джигадло Е. Н., Джигадло М. И., Голышкина Л. В. Методические рекомендации по использованию биотехнологических методов в работе с плодовыми, ягодными и декоративными культурами. Орел: ВНИИСПК, 2005, 49.

13. Калашникова Е. А., Чередниченко М. Ю., Киракосян Р. Н. и др.: Лабораторный практикум по биотехнологии растений: Практикум. М.: Компания КноРус, 2019, 240 с. ISBN 978-5-4365-4229-4. EDN UTWLML.

14. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio-assays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant. 1962:15(3):473-497.

15. Фоменко Н. Г., Жолобова О. О., Сорокопудов В. Н. Ингибирование фенольных соединений на этапе введения в культуру in vitro Ribes aureum Pursh для увеличения приживаемости эксплантов, Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии . 2022;7:85-92. EDN KCMSSS.

16. Матушкина О. В., Пронина И. Н., Матушкин С. А., Кружкова Л. В. Модифицированные элементы технологии размножения садовых культур in vitro, Плодоводство и ягодоводство России. 2020;61:44-53. DOI: 10.31676/2073-4948-2020-61-44-53. EDN ACCYPE.